Tác động của việc bổ sung chitin vào thức ăn lên khả năng kháng lại Vibrio parahaemolyticus của tôm thẻ chân trắng (Litopenaeid vannamei)

,1%; 1%; 2%; 4% và 8%. Mỗi nghiệm thức thí nghiệm được lặp lại 3 lần. Sau 2 
tuần nuôi, vi khuẩn Vibrio parahaemolyticus được cho trực tiếp vào môi trường nuôi với nồng độ là 104,54cfu/
mL. Kết quả thí nghiệm cho thấy tỉ lệ chết tích lũy của tôm thẻ chân trắng ở nghiệm thức cho ăn thức ăn có bổ 
sung 1% và 2% chitin là 25% thấp hơn (P=0,002) so với tỉ lệ chết tích lũy của tôm ở nghiệm thức đối chứng. 
Tỉ lệ chết tích lũy của tôm thẻ ở các nghiệm thức còn lại so với đối chứng không có sự khác biệt (P>0,05).
Từ khóa: Tôm thẻ chân trắng, cỡ hạt chitin, tế bào máu, hoạt tính thực bào
ABSTRACT
Evaluation of the protective of dietary chitin supplementation to Vibrio parahaemolyticus in white leg 
shrimp Litopenaeus vannamei was performed with 6 treatments. Shrimp (mean weight 1.74 ± 0.22g) were fed 
diets supplemented with chitin at concentrations of 0%, 0.1%, 1%, 2%, 4% and 8% in triplicate for 2 weeks. 
Shrimp in all treatments were challenged by adding V. parahaemolyticus at the dose of 104,54cfu/mL directly to 
the culture tank. The experimental results showed that the cumulative mortality of the white leg shrimp in the 
treatment fed with 1% and 2% chitin supplement were 25% lower (P = 0.002) than the cumulative mortality 
of shrimp in the control treatment. There was no difference in cumulative mortality of white shrimp in the 
remaining treatments compared with control treatment (P>0.05).
Key words: Litopenaeus vannamei, chitin size, haemocyte, phagocytic activity.
1. ĐẶT VẤN ĐỀ
Bệnh hoại tử gan tụy cấp (Acute 
hepatopancreatic necrosis syndrome - AHPNS) 
là một trong những bệnh nguy hiểm thường 
gặp ở tôm he nuôi. Bệnh lần đầu tiên xuất 
hiện ở Việt Nam vào năm 2010 với tên gọi 
Hội chứng chết sớm (Đặng Thị Hoàng Oanh 
và Nguyễn Thanh Phương, 2012). Tác nhân 
gây bệnh được xác định là chủng vi khuẩn 
Vibrio parahaemolyticus có mang gen độc 
tố PirA và PigB ở plasmid (Lai và cộng sự, 
2015; Theethakaew và cộng sự, 2017). Việc sử 
dụng kháng sinh trong điều trị bệnh AHPNS 
là một trong những giải pháp thường được sử 
dụng nhưng nhiều nghiên cứu đã chỉ ra rằng 
giải pháp này không bền bởi dư lượng kháng 
sinh trên tôm cũng như sự xuất hiện ngày ngày 
nhiều chủng vi khuẩn kháng thuốc. Một số giải 
pháp khác thay thế kháng sinh như sử dụng 
thảo dược như dịch chiết từ cây chó đẻ thân 
xanh, lá trầu không, lá và hạt sim (Trần Vinh 
Phương và cộng sự, 2019; Đặng Thị Lụa và 
cộng sự, 2015), sử dụng probiotic hay các chất 
kích thích miễn dịch không đặc hiệu cũng đã 
được nghiên cứu và chứng minh là có hiệu quả.
Chitin là một polysacarit tự nhiên được tìm 
thấy nhiều ở vỏ động vật giáp xác, côn trùng 
và nấm. Nó được biết đến như là một chất kích 
46 • TRƯỜNG ĐẠI HỌC NHA TRANG
Tạp chí Khoa học - Công nghệ Thủy sản Số 4/2020
thích miễn dịch (immunostimulants) làm tăng 
khả năng đáp ứng miễn dịch không đặc hiệu 
và tỉ lệ sống của động vật thủy sản (Maqsood 
và cộng sự, 2011). Hiệu quả của việc sử dụng 
chitin trong việc làm tăng tốc độ sinh trưởng 
và tỉ lệ sống ở giáp xác đã được chứng minh 
ở tôm sú Penaeus monodon (Niu và cộng sự 
2013; Shiau và Yu 1998), Tôm thẻ chân trắng 
Litopenaeus vannamei (Wang và Chen 2005), 
tôm càng nhỏ Procambarus clarkii (Zhu và 
cộng sự 2010). 
Nghiên cứu này được thực hiện nhằm đánh 
giá tác động của việc bổ sung chitin vào thức 
ăn lên khả năng kháng lại bệnh hoại tử gan tụy 
cấp do vi khuẩn Vibrio parahaemolyticus gây 
ra ở tôm thẻ chân trắng. 
2. PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.1 Chuẩn bị tôm
Tôm thẻ chân trắng postlarvae 15 (PL15) với 
số lượng là 1500 con được đưa về nuôi dưỡng 
trong bể 2000L cho đến khi khối lượng trung 
bình đạt 1,61 ± 0,21g. Tôm được bố trí vào 6 
nghiệm thức, mỗi nghiệm thức gồm 3 bể nuôi có 
thể tích 250L chứa 200L nước biển với mật độ 
là 100 con /bể. Ở nghiệm thức đối chứng, tôm 
được cho ăn bằng thức ăn V992 (protein 40%, 
lipid 6-8%, tro 16%, Xơ 4%, độ ẩm 11%) của 
công ty Uni president trong khi ở các nghiệm 
thức NT0,1%, NT1%, NT2%, NT4% và NT8%, 
thức ăn V992 cho tôm ăn có bổ sung chitin với 
hàm lượng lần lượt là 0,1; 1; 2; 4 và 8% chitin 
bằng cách xác đưa lượng chitin cần thiết vào dầu 
mực và trộn đều vào thức ăn, để khô trong 20 
phút ở nơi ẩm mát. Trong quá trình thuần dưỡng, 
tôm được nuôi ở độ mặn 28-30ppt, pH: 8-8.1, 
oxy hòa tan (DO): >5mg/L, nhiệt độ: 28-29oC. 
Tôm được cho ăn 4 lần/ngày với lượng thức ăn 
khoảng 10% khối lượng thân. Hàng ngày các 
thức ăn thừa và vỏ tôm lột được si phon ra khỏi 
bể và thay nước 60%.
2.2 Chuẩn bị vi khuẩn
Chủng vi khuẩn Vibrio parahaemolyticus 
(V.para NT13) lưu giữ tại Trung tâm Nghiên 
cứu giống và dịch bệnh, trường Đại học Nha 
Trang được phân lập từ tôm thẻ chân trắng 
nuôi tại Ninh Thuận có biểu hiện đặc trưng 
của hội chứng gan tụy cấp được sử dụng trong 
nghiên cứu này. Chủng V.para NT13 được nuôi 
cấy trên môi trường TSA (Tryptic soy agar bổ 
sung 1,5% NaCl) ở nhiệt độ 28ºC trong 24h 
trước khi chuyển sang môi trường TSB (tryptic 
soy broth bổ sung 1,5% NaCl) nuôi ở nhiệt độ 
tương tự trong 24h.
2.3 Xác định liều vi khuẩn gây chết 30% quần 
đàn tôm thẻ (LD30)
Thí nghiệm được tiến hành với 6 nghiệm 
thức. Mỗi nghiệm thức gồm 3 bể chứa 50L 
nước biển và bố trí 20 tôm thẻ chân trắng/bể. 
Các điều kiện môi trường nuôi được duy trì 
tương tự nội dung 2.1. Lần lượt cho vi khuẩn 
đã nuôi cấy ở môi trường TSB vào các nghiệm 
thức với mật độ vi khuẩn cuối cùng trong bể 
nuôi từ nghiệm thức 1 đến nghiệm thức 6 lần 
lượt là 0, 104, 5×104, 105, 5×105 và 106 cfu/ml. 
Theo dõi và ghi nhận số lượng tôm chết cho 
đến khi tôm dừng chết liên tục 5 ngày. Tất cả 
các tôm chết trong quá trình thí nghiệm đều 
được phân lập vi khuẩn trên môi trường TCBS 
để xác định sự có mặt của vi khuẩn V. para 
NT13. Sử dụng hàm probit trong phần mềm 
SPSS statistics 22 để xác định LD30.
2.4 Nghiên cứu tác động của chitin lên 
khả năng kháng lại vi khuẩn Vibrio 
parahaemolyticus của tôm thẻ chân trắng.
Sau khi cho tôm ăn thức ăn có bổ sung chitin 
như đã trình bày ở phần 2.1 được 2 tuần, thu 
20 tôm ở mỗi bể nuôi chuyển sang bể chứa 50L 
nước biển. Duy trì các điều kiện môi trường 
nuôi tương tự nội dung 2.1. Cho vào môi trường 
nuôi vi khuẩn V. parahaemolyticus với liều gây 
chết khoảng 30% quần đàn tôm nuôi (liều LD30 
của vi khuẩn đối với tôm nuôi cần được xác 
định ở mục 2.3). Quan sát hoạt động của tôm 
hàng ngày và thu lấy các tôm chết để kiểm tra 
sự có mặt của vi khuẩn V. parahaemolitycus. Thí 
nghiệm kết thúc khi sau 5 ngày mà không có 
tôm chết ở bất kỳ nghiệm thức nào.
2.5. Phương pháp phân tích và xử lý số liệu
Các số liệu thu thập từ thí nghiệm được xử 
lý thống kê dựa trên phần mềm SPSS statistics 
22. Sử dụng hàm probit để xác định liều gây 
chết 30% của vi khuẩn đối với tôm thẻ. Tỉ lệ 
chết tích lũy ở các nghiệm thức được so sánh 
dựa trên việc phân tích phương sai một yếu tố 
Tạp chí Khoa học - Công nghệ Thủy sản Số 4/2020
TRƯỜNG ĐẠI HỌC NHA TRANG • 47
(one way anova) bằng phép thử Tukey HSD 
với độ tin cậy 95%. 
3. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
3.1 Kết quả xác định liều gây chết 30% quần 
đàn tôm thẻ chân trắng
Kết quả theo dõi tác hại của vi khuẩn V. 
parahaemolyticus đối với tôm thẻ chân trắng 
cho thấy vi khuẩn này có độc tính khá cao. 
Khi công cường độc vi khuẩn vào tôm thẻ 
bằng phương pháp ngâm với nồng độ 105 – 
106 cfu/mL, tôm có hiện tượng bỏ ăn và chết 
sau 8 – 12h. Ở các nghiệm thức cảm nhiểm 
vi khuẩn với liều nhẹ hơn (104cfu/mL), hiện 
tượng tôm chết được quan sát thấy sau 1-2 
ngày (Hình 3.1). 
Tất cả tôm chết đều thể hiện dấu hiệu đặc 
trưng của bệnh hoại tử gan tụy cấp như đường 
ruột không chứa thức ăn, dạ dày trống rỗng và 
gan nhợt nhạt, teo và nhão (Hình 3.2). 
Kết quả phân lập vi khuẩn từ khối gan tụy 
cho thấy sự có mặt của V. parahaemolyticus ở 
tất cả những tôm chết. Từ ngày thứ 6 đến ngày 
thứ 10 của thí nghiệm, không xảy ra hiện tượng 
tôm chết ở bất kì đơn vị thí nghiệm nào. Kết 
quả phân tích sự tương quan giữa nồng độ vi 
khuẩn gây bệnh và tỉ lệ chết của tôm thẻ chân 
trắng ở các nghiệm thức thí nghiệm dựa trên 
hàm probit trong phần mềm SPSS cho thấy liều 
gây chết 30% quần đàn tôm thẻ chân trắng của 
vi khuẩn V. parahaemolyticus tương ứng nồng 
độ 104,54cfu/mL (Hình 3.3).
Hình 3.1 Tỉ lệ chết tích lũy của tôm thẻ chân trắng sau khi cảm nhiễm V. parahaemolyticus 
với các nồng độ khác nhau.
Hình 3.2 Tôm thẻ chân trắng bị hoại tử gan tụy cấp (bên trên) so sánh với tôm bình thường (bên dưới).
48 • TRƯỜNG ĐẠI HỌC NHA TRANG
Tạp chí Khoa học - Công nghệ Thủy sản Số 4/2020
Hình 3.3 Tương quan giữa nồng độ vi khuẩn V. parahaemolyticus 
và tỉ lệ chết tích lũy của các nhóm tôm thí nghiệm.
Hình 3.4 Tỉ lệ chết tích lũy của tôm he chân trắng ở 
các nghiệm thức cho ăn thức ăn bổ sung chitin với các nồng độ khác nhau.
3.2 Kết quả nghiên cứu tác động của chitin 
lên khả năng kháng lại vi khuẩn Vibrio 
parahaemolyticus của tôm thẻ chân trắng.
Kết quả nghiên cứu cho thấy sau khi cảm 
nhiễm vi khuẩn V. parahaemolyticus vào 
tôm thí nghiệm, hầu hết tôm ở các nghiệm 
thức đều có dấu hiệu giảm hoặc bỏ ăn ở 
ngày thứ 2. Hiện tượng tôm chết đều xảy 
ra ở tất cả các nghiệm thức từ ngày thứ 3 
(Hình 3.4). 
Các tôm chết cũng biểu hiện dấu hiệu bệnh 
lý như đã trình bày ở nội dung 3.1. Tuy nhiên, 
có sự khác biệt về tỉ lệ tôm chết tích lũy giữa 
các nghiệm thức (P<0,05). Sự khác biệt về tỉ lệ 
chết do V. parahaemolyticus gây ra ở tôm được 
cho ăn thức ăn có bổ sung 0,1% chitin không 
được thể hiện rõ so với đối chứng (P=0,413). 
Nhưng khi nâng lượng chitin bổ sung vào thức 
ăn lên 1% và 2%, sức đề kháng của tôm thẻ 
chống lại V. parahaemolyticus tăng lên rõ rệt 
(P=0,002). Tỉ lệ tôm chết tích lũy ở 2 nghiệm 
thức này giảm còn 25% so với đối chứng là 
38,33%. Thế nhưng khi lượng chitin bổ sung 
vào thức ăn được nâng từ 4 – 8%, sức đề kháng 
của tôm thẻ chân trắng chống lại vi khuẩn V. 
parahaemolyticus lại giảm đi và không có sự 
khác biệt so với tôm thẻ đối chứng.
Tác động của chitin lên sinh trưởng, phát 
Tạp chí Khoa học - Công nghệ Thủy sản Số 4/2020
TRƯỜNG ĐẠI HỌC NHA TRANG • 49
triển và sức đề kháng của giáp xác đã được 
công bố bởi một số khoa học (Fox, 1993; Niu 
và cộng sự 2013; Wang và Chen 2005; Zhu và 
cộng sự, 2010). Nghiên cứu của Zhu và cộng 
sự (2010) cho thấy việc bổ sung chitin vào thức 
ăn cho tôm càng nhỏ Procambarus clarkii với 
lượng 0,5% sẽ nâng cao sức đề kháng của tôm 
kháng lại virus gây bệnh đốm trắng. Shiau và 
Yu (1998) đã thực hiện thí nghiệm bổ sung 
chitin vào thức ăn cho tôm sú với các hàm 
lượng 2%, 5% và 10% và chỉ ra rằng việc bổ 
sung 5% chitin vào thức ăn giúp cho tôm sú 
tăng trưởng nhanh nhất. Nghiên cứu của Wang 
và Chen (2005) cũng đã chứng minh hiệu quả 
của chitin trong việc nâng cao sức đề kháng 
của tôm thẻ chân trắng chống lại vi khuẩn 
Vibrio alginolyticus. Tuy nhiên, nghiên cứu 
của Fox (1993) được thực hiện với 4 mức bổ 
sung chitin vào thức ăn 4%, 8%, 12% và 16% 
cho thấy chitin không ảnh hưởng gì đến tăng 
trưởng và tỉ lệ sống của tôm sú. Nghiên cứu 
của Niu và các cộng sự (2013) lại chỉ ra rằng 
bổ sung chitin vào thức ăn ở mức 0,4% là phù 
hợp nhất cho tôm sú.
Trong nghiên cứu này, những kết quả thu 
thập được đã chỉ ra mức bổ sung chitin vào 
thức ăn cho tôm thẻ chân trắng phù hợp nhất 
là 1-2%. Điều này có thể được lý giải như sau: 
chitin khi vào hệ thống tiêu hóa của tôm thẻ có 
thể được biến đổi thành những dẫn xuất khác 
nhau và tác động khác nhau lên sức đề kháng 
của tôm thẻ. Tuy nhiên, với những gì đã được 
công bố, chitin là một immunostimulant, vì thế 
sự khác nhau về thời gian sử dụng chitin có thể 
là nguyên nhân gây ra sự khác biệt về kết quả 
nghiên cứu như đã nêu trên.
4. KẾT LUẬN
Việc bổ sung 1-2% chitin vào thức ăn cho 
tôm sú trong 2 tuần có tác dụng làm tăng khả 
năng kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp do Vibrio 
parahaemolyticus gây ra ở tôm sú.
LỜI CẢM ƠN
Nghiên cứu này được tài trợ bởi đề tài 
nghiên cứu khoa học trường Đại học Nha Trang 
(mã số: TR2019-13-17) và Công ty TNHH sản 
xuất thương mại xuất nhập khẩu Đông Dương. 
Xin chân thành cảm ơn sự hỗ trợ quý báu đó.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Tiếng Việt
1. Đặng Thị Lụa, Nguyễn Thị Hạnh, Hoàng Hải Hà, Trương Thị Mỹ Hạnh và Phan Thị Vân, 2015. Tác dụng 
diệt khuẩn in vitro của dịch chiết lá trầu không (Piper betle L.) và dịch chiết lá ổi (Psidium guajava) đối với vi 
khuẩn gây bệnh hoại tử gan tụy cấp trên tôm nuôi nước lợ. Tạp chí Nông nghiệp và phát triển Nông thôn tập 
11, 92 – 97.
2. Đặng Thị Hoàng Oanh và Nguyễn Thanh Phương, 2012. Các bệnh nguy hiểm trên tôm nuôi ở Đồng bằng 
song Cửu Long. Tạp chí Khoa học Trường Đại học Cần Thơ. 106 – 118.
3. Trần Vinh Phương, Hoàng Thị Ngọc Hân, Đặng Thanh Long, Phạm Thị Hải Yến và Nguyễn Quang Linh, 
2019. Hoạt tính kháng khuẩn của dịch chiết từ cây chó đẻ thân xanh (Phyllanthus amarus) đối với vi khuẩn 
vibrio parahaemolyticus và vibrio sp. gây bệnh hoại tử gan tụy cấp trên tôm chân trắng (Litopenaeus vannamei). 
Tạp chí Khoa học đại học Huế: Khoa học tự nhiên tập 128. 99-106. 
50 • TRƯỜNG ĐẠI HỌC NHA TRANG
Tạp chí Khoa học - Công nghệ Thủy sản Số 4/2020
Tiếng Anh
4. Fox CJ, 1993. The effect of dietary chitin on the growth, survival and chitinase levels in the digestive of 
juvenile (Penaeus monodon). Aquaculture 109, 39–49
5. Lai HC, Ng TH, Ando M, Lee CT, Chen IT, Chuang JC, Mavichak R, Chang SH, Yeh MD, Chiang YA, 
Takeyama H, Hamaguchi H, Lo CF, Aoki T and Wang HC, 2015. Pathogenesis of acute hepatopancreatic 
necrosis disease (AHPND) in shrimp. Fish and Shellfi sh Immunology. 47(2). 1006 – 1014
6. Maqsood S, Singh P, Samoon MH and Munir K, 2011. Emerging role of immunostimulants in combating the 
disease outbreak in aquaculture. International aquatic research 3. 147 – 163.
7. Niu J, Lin H, Jiang S, Chen X, Wu K, Liu Y, Wang, Tian L, 2013. Comparison of effect of chitin, chitosan, 
chitosan oligosaccharide and N-acetyl-D-glucosamine on growth performance, antioxidant defenses and 
oxidative stress status of Penaeus monodon. Aquaculture 372–375,1-8
8. Shiau SY, Yu YP, 1998. Chitin but not chitosan supplementation enhance the growth of grass shrimp, Penaeus 
monodon. Journal of Nutrition 128, 908–912.
9. Theethakaew C, Nakamura S, Motooka D, Matsuda S, Kodama T, Chonsin K, Suthienkul O and Iida T, 
2017. Plasmid dynamics in Vibrio parahaemolyticus strains related to shrimp acute Hepatopancreatic necrosis 
syndrome (AHPNS). Infection, Genetics and Evolution. 51: 211-218
10. Wang SH, Chen JC, 2005. The protective effect of chitin and chitosan against Vibrio alginolyticus in white 
shrimp Litopenaeus vannamei. Fish and Shellfi sh Immunology 19, 191–204.
11. Zhu F, Quan H, Du H and Xu Z, 2010. The Effect of dietary chitosan and chitin supplementation on the 
survival and immune reactivity of crayfi sh, Procambarus clarkia. Journal of the world aquaculture society. Vol 
41 284-290.