Công thức bạch cầu của máu ngoại vi cùng các cơ quan tạo máu ở loài cá lóc đồng Xhanna striata (Bloch, 1793) và lươn Monopterus albus (Zuiew, 1793) thu từ Vườn Quốc gia Cát Tiên (Việt Nam)

 nghiên cứu cần thiết như vậy sẽ giúp cho việc nắm 
bắt hướng sắp xếp lại hình thái thành phần tế bào bạch cầu trong quá trình thích nghi 
của cá với các điều kiện sống khác nhau. Việc tích lũy dữ liệu cho phép thực hiện 
nghiên cứu so sánh về thành phần định lượng và định tính bạch cầu ở cá sống trong 
các điều kiện môi trường khác nhau. 
Những dữ liệu đã công bố về thành phần bạch cầu của các loài cá rất ít và mâu 
thuẫn với nhau bởi việc nghiên cứu được tiến hành trên các cá thể cá trong môi 
trường sống khác nhau và không có dữ liệu về thành phần bạch cầu của các cơ quan 
tạo máu. Mục đích nghiên cứu này là khảo sát thành phần bạch cầu máu và các cơ 
quan tạo máu của cá lóc đồng Channa striata và lươn Monopterus albus thu từ 
Vườn Quốc gia Cát Tiên (Việt Nam). 
 Nghiên cứu khoa học công nghệ 
Tạp chí Khoa học và Công nghệ nhiệt đới, Số 19, 11 - 2019 15
Cá lóc đồng Channa striata (Bloch, 1793) (Perciformes: Channidae) - một 
trong 38 loài thuộc giống Channa Scopoli, 1777 [13]. Đây là loài cá nước ngọt phổ 
biến ở phần lớn khu vực Đông Nam Á, từ Pakistan đến Thái Lan và phía Nam Trung 
Quốc. Cá lóc đồng sinh sống ở những thủy vực nước đứng và nước chảy, yêu thích 
nơi nước đọng, nước đục ở sông hồ đồng bằng [14]. Điểm đặc biệt của loài cá này là 
khả năng hô hấp trong không khí vào mùa khô nhờ cơ quan trên mang [18]. Channa 
striata ăn cá, ếch nhái, rắn, côn trùng, giun đất, nòng nọc và giáp xác [19, 20]. 
Người dân ở các nước Đông Nam Á sử dụng cá lóc đồng làm thức ăn và nuôi 
thương phẩm khá nhiều. 
Lươn đồng Monopterus albus (Zuiew, 1793) (Synbranchiformes: 
Synbranchidae) - một trong 14 loài thuộc giống Monopterus Lacépède, 1800, phân 
bố rộng rãi ở Đông Nam Á, ngoài ra còn gặp ở Nhật Bản, quần đảo Hawaii và 
Malaysia [13]. Loài lươn này sống dưới đáy và các thủy vực có nguồn nước tự nhiên 
(sông suối vừa và lớn hay cửa sông), các vùng đất ngập nước trồng cây nông nghiệp 
[24]. Lươn đồng ăn các loài cá có kích thước nhỏ, giun và động vật giáp xác [15]. 
Thịt lươn có vị thơm, ngon nên chúng là loài có giá trị thương mại. 
2. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP 
Mẫu cá lóc đồng (Channa striata) được thu thập vào cuối tháng 11 - đầu tháng 
12 năm 2017 ở các thủy vực trong và xung quanh Vườn Quốc gia Cát Tiên. Mẫu 
nghiên cứu được thu từ 8 cá thể cá lóc đồng với khối lượng trung bình 635,79±33,83 g 
và 2 cá thể lươn đồng (Monopterus albus) có khối lượng trung bình 47,75±0,25 g. 
Máu được lấy từ tĩnh mạch đuôi ngay sau khi bắt. Làm tiêu bản máu trên lam 
kính. Đối với cá lóc đồng, tiến hành làm tiêu bản cắt lát với các cơ quan như thận, lá 
lách và gan. Sau đó, các tiêu bản được để khô và cố định bằng dung dịch etanol 96% 
trong 30 phút. Tiến hành nhuộm tiêu bản trong điều kiện thí nghiệm bằng thuốc 
nhuộm Romanowsky-Giemsa. Soi dưới kính hiển vi quang học “Biomed-6PR1-FK” 
(×360), mỗi tiêu bản phân tích 200 tế bào bạch cầu. Định loại bạch cầu và đếm số 
lượng tương đối của tế bào lympho, bạch cầu trung tính, bạch cầu ái toan, bạch cầu 
đơn nhân và các dạng tế bào nguyên phát căn cứ vào phân loại của tác giả Ivanova 
[2]. Xử lý thống kê kết quả nghiên cứu theo tiêu chuẩn Wilcoxon-Mann-Whitney 
(p = 0,05). Giá trị trung bình và sai số chuẩn được tính theo những phương pháp 
chuẩn [21] cùng chương trình “Statistica 10.0”. 
3. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 
Kết quả nghiên cứu cho thấy trong máu của cá lóc đồng và lươn đồng có tế 
bào lympho, bạch cầu đơn nhân, bạch cầu trung tính, bạch cầu ái toan và các dạng tế 
bào nguyên phát (bảng 1). 
 Nghiên cứu khoa học công nghệ 
Tạp chí Khoa học và Công nghệ nhiệt đới, Số 19, 11 - 2019 16
Bảng 1. Công thức bạch cầu của cá lóc đồng và lươn đồng 
Tế bào 
lympho 
Bạch cầu đơn 
nhân / Đại thực 
bào 
Bạch cầu trung 
tính Bạch cầu ái toan 
Tế bào 
nguyên 
phát 
Channa striata 
Máu ngoại vi, % 
86 ± 2,5 5 ± 1,2 0,5 ± 0,2 0,5 ± 0,2 8 ± 1,5 
Thận, % 
82 ± 3,2 4,5 ± 0,9 1 ± 0,3 0,5 ± 0,2 12 ± 2,2 
Lá lách, % 
92 ± 1,7 3 ± 0,6 0,5 ± 0,2 0 4,5 ± 1,6 
Gan, % 
96 ± 0,9 2 ± 0,7 0 0 2 ± 0,7 
Monopterus albus 
Máu ngoại vi, % 
92 ± 4 2,5 ± 1,8 1 ± 0,1 0 4,5 ± 2,5 
Trong máu của Channa striata và Monopterus albus, cũng như ở phần lớn các 
loài cá khác, lympho là dòng tế bào chiếm ưu thế trong số các tế bào bạch cầu. Trên 
các tiêu bản máu thành phần tế bào lympho của cá lóc đồng và lươn đồng chiếm tới 
82-96% số tế bào bạch cầu. Căn cứ vào những quan niệm hiện có, tế bào lympho là 
các tế bào quan trọng của hệ miễn dịch: chúng đảm bảo việc nhận biết các vật thể, 
các hạt “của cơ thể” và “của lạ”, sự xâm nhập của các vật thể lạ, tổng hợp kháng thể, 
điều hòa sự hình thành miễn dịch thích nghi... [8, 22, 23]. 
Trong máu ngoại vi của các loài được nghiên cứu, số lượng bạch cầu không 
hạt - bạch cầu đơn nhân - thấp hơn vài lần so với tế bào lympho nhưng lại nhiều hơn 
bạch cầu hạt. Với cá lóc đồng, số lượng những tế bào này cao hơn hai lần so với 
lươn đồng, tuy nhiên, sự khác biệt không có ý nghĩa thống kê. 
Bạch cầu đơn nhân - tế bào thực bào chủ động của máu. Chúng tiêu thụ sản 
phẩm phân hủy của tế bào và mô, tham gia vào sự điều hòa miễn dịch và tạo bạch 
cầu hạt, ảnh hưởng đến đặc điểm di chuyển của bạch cầu trung tính [24, 25]. Ở các 
cơ quan, dạng trưởng thành của các tế bào này chính là đại thực bào [26]. Trên những 
tiêu bản lát cắt, hàm lượng bạch cầu đơn nhân nhiều nhất gặp ở tiêu bản thận bởi thận 
là nơi chủ yếu hình thành bạch cầu đơn nhân [6], còn gan là nơi sản sinh ít nhất. 
 Nghiên cứu khoa học công nghệ 
Tạp chí Khoa học và Công nghệ nhiệt đới, Số 19, 11 - 2019 17
Số lượng tương đối của bạch cầu hạt - bạch cầu trung tính và bạch cầu ái toan- 
ở cả hai loài đều rất thấp, không quá 1%. Bạch cầu hạt tham gia vào quá trình thực 
bào vi sinh vật, tổng hợp các chất môi giới cho phản ứng miễn dịch, các yếu tố miễn 
dịch không đặc hiệu [16]. Trong máu ngoại vi và các cơ quan tạo máu của cá lóc 
đồng đã phát hiện hai loại bạch cầu hạt, trong máu của lươn đồng chỉ phát hiện bạch 
cầu trung tính, điều này có thể là do số lượng mẫu thu được không nhiều. Bạch cầu 
hạt có tính kháng ký sinh trùng, tính kháng sinh, tính thực bào, và kiểm soát các 
phản ứng viêm [25]. Hàm lượng bạch cầu ái toan và bạch cầu ái kiềm ở trong máu 
lươn ít hoặc không có cũng được các tác giả khác xác nhận [16, 27]. 
Số lượng tế bào nguyên phát ở các loài cá nước ngọt có thể lên tới 10% và tỷ 
lệ của chúng trong công thức bạch cầu phụ thuộc vào đặc điểm loài và đặc điểm sinh 
thái của cá [1, 2]. Trong công thức bạch cầu máu ngoại vi cá lóc đồng, số lượng tế 
bào nguyên phát cao hơn gần hai lần so với lươn. Trong số các cơ quan miễn dịch, 
số lượng tế bào nguyên phát lớn nhất được ghi nhận trong cơ quan tạo máu chính 
của các loài cá có xương, đó là thận. Ở lá lách, nơi diễn ra quá trình hình thành tế 
bào lympho hạt [2, 6, 12, 28], những tế bào này được ghi nhận với số lượng ít hơn 
ba lần, còn ở gan - số lượng của chúng không vượt quá 2%. 
Phân tích các số liệu thu được cho thấy, Channa striata và Monopterus albus 
khác với những loài cá nước ngọt khác bởi hàm lượng bạch cầu hạt thấp. Ở cả hai 
loài nghiên cứu đều không bắt gặp tế bào bạch cầu ái kiềm, còn ở lươn không bắt 
gặp cả bạch cầu ái toan. Những khác biệt này phản ánh đặc điểm loài của chúng. Rõ 
ràng những loại bạch cầu này không được sử dụng trong các phản ứng miễn dịch. Sự 
hiện diện tương tự của ba loại bạch cầu ghi nhận trong máu của cá hồi vân 
Parasalmo mykiss [29], cá bơn Pleuronectes platessa [7] và mô tạo máu của cá xanh 
lam Pomatomus saltatrix (L.) [30]. 
4. KẾT LUẬN 
- Các tế bào bạch cầu của Channa striata và Monopterus albus không đồng 
nhất về đặc điểm hình thái, chức năng và được đại diện bởi các tế bào có cấu trúc 
khác nhau. 
- Tế bào lympho là tế bào chiếm ưu thế trong thành phần bạch cầu máu ngoại 
vi cũng tương tự như phần lớn các loài cá nước ngọt khác. 
- Hàm lượng tế bào bạch cầu hạt ở Channa striata và Monopterus albus chiếm 
ít hơn 1%. 
Lời cảm ơn: Bài báo được thực hiện trong khuôn khổ Nhiệm vụ cấp Quốc gia 
(Đề tài số № АААА-А18-118012690123-4). Tác giả trân trọng cảm ơn TSKH 
Tyunov A.V. (IPEE RAS) đã tổ chức chuyến khảo sát, cùng các cán bộ Chi nhánh 
phía Nam của Trung tâm Nhiệt đới Việt - Nga, TS Trynov V.L., TS Vasileva A.B., TS 
Palko Y.V và TS Semeniuk Y.Y đã giúp đỡ thu thập mẫu vật. 
 Nghiên cứu khoa học công nghệ 
Tạp chí Khoa học và Công nghệ nhiệt đới, Số 19, 11 - 2019 18
TÀI LIỆU THAM KHẢO 
1. Головина Н.А., Тромбицкий И.Д., Гематология прудовых рыб. Кишинев: 
Штиинца, 1989, C.156. 
2. Иванова Н.Т., Атлас клеток крови рыб, М.: Легкая и пищевая 
промышленность, 1983, 184 с. 
3. Изергина, Е.Е., Изергин И.Л., Изергин Л.И., Атлас клеток крови лососевых 
рыб материкового побережья северной части Охотского моря, Магадан: 
Кордис, 2014, 127 с. 
4. Назарова Е.А., Заботкина Е.А., Особенности лейкоцитарного состава 
почек у некоторых видов пресноводных и морских костистых рыб, 
Биология внутренних вод, 2010, 2:92-97. 
5. Ellis A.E., The leucocytes of fish: a review, J. Fish. Biol, 1977, 11(5):453-491. 
6. Fänge R., The formation of eosiniphilic granulocytes in the eosophageal 
lymphomyeloid tissue in the elasmobranches, Acta Zool. Stockh, 1968, 
49:155-161. 
7. Flerova E.A., Balabanova L.V., Ultrastructure of Granulocytes of Teleost Fish 
(Salmoniformes, Cypriniformes, Perciformes), Journal of Evolutionary 
Biochemistry and Physiology, 2013, 49(2):223-233. 
8. Gordeev I.I., Mikryakov D.V., Balabanova L.V., Mikryakov V.R., Composition 
of Leucocytes in Peripheral Blood of Antarctic Toothfish Dissostichus 
mawsoni (Nototheniidae), Journal of Ichthyology, 2014, 54(6):422-425. 
9. Заботкина Е.А., Лапирова Т.Б., Середняков В.Е., Нестерова Т.А., 
Экологическая пластичность гематологических показателей 
пресноводных костистых рыб, Труды Института биологии внутренних 
вод., 2015. вып, 72(75):16-29. 
10. Яхненко В.М., Клименков И.В., Особенности состава и структуры 
клеток крови рыб пелагиали и прибрежья озера Байкал, Известия РАН, 
2009, Серия биологическая, 1:46-54. 
11. Минеев А.К., Калинин Е.А., Особенности лейкоцитарной формулы у 
плотвы (Rutilus rutilus Linnaeus, 1758) из водоёмов разного типа (на 
примере Саратовского водохранилища и малых рек Республики 
Удмуртия), Известия Самарского НЦ РАН, 2012, 1:213-217. 
12. Argungu L.A., Amin S.M.N., Bakhari A.N.B., Ara R., Rahman M.A., Arshad 
A., Aliyu-Paiko M., Biochemical and haematological profile of Malaysian 
snakehead, Channa striatus (Bloch), Journal of Food, Agriculture and 
Environment, 2015, 13(1):12-17. 
13. George K.R., Malini N.A., Rajasree D., Effects of acclimation on the 
haematological indices of different groups of fresh water teleosts, Journal of 
Applied and Natural Science, 2015, 7(1):5-9. 
 Nghiên cứu khoa học công nghệ 
Tạp chí Khoa học và Công nghệ nhiệt đới, Số 19, 11 - 2019 19
14. Hien T.T.T., Duc P.M., Tran-Tu L.C., Phu T.M., Thy D.T.M., Bengtson D.A., 
Growth performance and immune response of snakehead, Channa striata 
(Bloch 1793) fed soy diets with supplementation of Mannan Oligosaccharides, 
Asian Fisheries Science, 2016, 29:67-81. 
15. Munir M.B., Hashim R., Azizah S., Nor M., Marsh T.L., Effect of dietary 
prebiotics and probiotics on snakehead (Channa striata) health: Haematology 
and disease resistance parameters against Aeromonas hydrophila, Fish and 
Shellfish Immunology, 2018. 
16. Ponsen S., Narkkong N.-A., Pamok S., Aengwanich W., Comparative 
Hematological Values, Morphometric and Morphological Observation of the 
Blood Cell in Capture and Culture Asian Eel, Monopterus albus (Zuiew), 
American Journal of Animal and Veterinary Sciences, 2009, 4(2):32-36. 
17. Wang Y., Mao Z., Li L., Study on blood physiology of ricefield eel 
(Monopterus albus), Amino Acids and Biotic Resources, 2002, 24(1):7-8. 
18. Davidson A., Fish and fish dishes of Laos, Imprimerie Nationale Vientiane, 
1975, 202 p. 
19. Allen G.R., Field guide to the freshwater fishes of New Guinea, Publication, 
Christensen Research Institute, Madang, Papua New Guinea, 1991, No.9, 268p. 
20. Menon A.G.K., Check list - fresh water fishes of India, Rec. Zool. Surv. India, 
Misc. Publ., Occas. Pap., 1999, No.175, 366 p. 
21. Лакин Г.Ф., Биометрия, Учебное пособие для биол. спец, вузов, 4-е изд., 
перераб. и доп., М.: Высшая школа, 1990, 352 с. 
22. Кондратьева И.А., Киташова А.А., Функционирование и регуляция 
иммунной системы рыб, Иммунология, 2002, 2:97-101. 
23. Микряков В.Р., Закономерности формирования приобретенного 
иммунитета у рыб, Рыбинск: ИБВВ РАН, 1991, 153 с. 
24. Житенева Л.Д., Полтавцева Т.Г., Рудницкая О.А., Атлас нормальных и 
патологически измененных клеток крови рыб. Справочник. Ростов-на-
Дону: Ростовское книжное издательство, 1989, 112 с. 
25. Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д., Иммунология. М.: Мир, 2000, 592 с. 
26. Флёрова Е.А., Клеточная организация почек костистых рыб (на примере 
отрядов Cypriniformes и Perciformes), Ярославль: Ярославская ГСХА, 
2012, 140 с. 
27. Yamamoto M.N, Tagawa A.W., Hawai'i's native and exotic freshwater 
animals, Mutual Publishing, Honolulu, Hawaii, 2000, 200 p. 
28. Rahman A.K.A., Freshwater fishes of Bangladesh, Zoological Society of 
Bangladesh, Department of Zoology, University of Dhaka, 1989, 364 p. 
 Nghiên cứu khoa học công nghệ 
Tạp chí Khoa học và Công nghệ nhiệt đới, Số 19, 11 - 2019 20
29. Пустовит Н.С., Пустовит О.П., Некоторые гематологические 
показатели молоди камчатской микижи Parasalmo mykiss, Вопросы 
ихтиологии, 2005, 5(45):680-688. 
30. Froese R., PaulyD., Fish Stocks, In: Encyclopedia of Life Science, Elsevier [in 
press] https://www.fishbase.us/summary/ 
SUMMARY 
THE LEUKOCYTE FORMULA OF PERIPHERAL BLOOD AND 
HEMATOPOIETIC ORGANS OF Channa striata (Bloch, 1793) AND Monopterus 
albus (Zuiew, 1793) FROM CATTIEN NATIONAL PARK (VIETNAM) 
The composition of leukocytes of peripheral blood of the snakehead Channa 
striata and rice eel Monopterus albus and the hematopoietic organs of the snakehead 
was investigated. It was established that the leukocytes of C. striata and M. albus 
were heterogeneous in terms of morphofunctional characteristics and different by 
cell structures: lymphocytes, monocytes, neutro-, eosinophils and blast cells. The 
compositions of blood leukocytes and hematopoietic organs were dominated by 
lymphocytes, following by blast forms of cells and a small percentage of 
granulocytes and monocytes/macrophages. Two types of granulocytes were revealed 
in the striped snakehead: neutrophils and eosinophils, while in rice eel - only 
neutrophils. 
Keywords: Fish, snakehead, eel, leukogram, leukocytes. 
(1) Viện Nghiên cứu Thủy sản và Hải dương học toàn Nga 
(2) Trường Đại học Tổng hợp Mát-x-cơ-va mang tên M.V. Lomonosov 
(3) Viện Sinh học nước nội địa, Viện Hàn lâm Khoa học Nga 
Nhận bài ngày 25 tháng 6 năm 2019 
Phản biện xong ngày 23 tháng 9 năm 2019 
Hoàn thiện ngày 18 tháng 10 năm 2019